操作方法*0F`感受態細胞100ul*50（以下操作均按無菌條件的標準進行）
1 取感受態細胞置于冰浴中，如需分裝可將剛融化細胞懸液分裝到無菌預冷的離心管中，置于冰浴中。
●  一次轉化感受態細胞的建議用量為50-100 μl，可以根據實際情況分裝使用。應注意所用DNA 體積不要超過感受態細胞懸液體積的十分之一。
以下實驗以100 μl感受態細胞為例。
*0F`感受態細胞100ul*502 向感受態細胞懸液中加入目的DNA（100 μl 的感受態細胞能夠被1 ng 超螺旋質粒DNA 所飽和），輕輕旋轉離心管以混勻內容物，在冰浴中靜置30 分鐘。
3 將離心管置于42℃水浴中放置60-90 秒，然后快速將管轉移到冰浴中，使細胞冷卻2-3 分鐘，該過程不要搖動離心管。
4 向每個離心管中加入900 μl 無菌的SOC 或LB 培養基（不含抗生素）， 混勻后置于37℃搖床振蕩培養1 小時（160-220 轉/分鐘），目的是使質粒上相關的抗性標記基因表達，使菌體復蘇。
5 將離心管內容物混勻，吸取100 μl 已轉化的感受態細胞加到含相應抗生素的SOB 或LB 固體瓊脂培養基上，用無菌的彎頭玻棒輕輕的將細胞均勻涂開。將平板置于室溫直至液體被吸收，倒置平板，37℃培養12-16 小時。
●  涂布用量可根據具體實驗來調整。如轉化的DNA 總量較多，可取更少量轉化產物涂布平板；反之，如轉化的DNA 總量較少，可取200-300 μl 轉化產物涂布平板。如果預計的克隆較少，可通過離心（4,000 rpm, 2分鐘）后吸除部分培養液，懸浮菌體后將其涂布于一個平板中。（涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的轉化菌落數過少可以將剩下的菌液再涂布新的培養板）
*0F`感受態細胞100ul*50注意事項
1. 感受態細胞應保存在 -70℃，不可多次凍融和放置時間過長，以避免降低感受態細胞的轉化效率。
2. 進行轉化操作時，應根據相應溫度及無菌條件的要求進行。
3 為防止轉化實驗不成功，可以保留部分連接反應液，以重新轉化，將損失降到低。
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